Общие сведения. Инфекция, заражение которой происходит в лечебно-профилактических учреждениях, называется внутрибольничной(синонимы: больничная

Инфекция, заражение которой происходит в лечебно-профилактических учреждениях, называется внутрибольничной(синонимы: больничная, внутригоспитальная, нозокомиальная).

Инфекция не считается внутрибольничной, если она является осложнением или продолжением инфекционного процесса, уже имевшегося у больного на момент госпитализации, а также если она развивается у новорожденного при трансплацентарной передаче (герпес, краснуха, токсоплазмоз, цитомегаловирусная инфекция, сифилис). Внутриутробными следует считать инфекции, появившиеся менее чем через 48 ч после рождения, если заражение не произошло после родов или в процессе прохождения плода через родовые пути.

Уровень внутрибольничной инфекции (ВБИ) среди пациентов ОАРИТ в 10 раз выше, чем в отделениях общего профиля. Величина этого показателя, а также структура ВБИ в значительной мере зависят от профиля лечебного учреждения. Наиболее часто она представлена пневмониями (30-50%), инфекциями нижних дыхательных путей, мочевыделительной системы (до 20% по каждому типу инфекции), инфекциями кровеносного русла (около 10%).

В основе частого развития ВБИ в ОАРИТ лежат следующие причины.

1. Специфическая экология (среда) отделений, которая характеризуется высокой плотностью «больничного населения» (пациентов и персонала), непрерывным поступлением новых больных, замкнутостью и теснотой пространства.

2. Постоянное наличие источников возбудителей инфекции (пациенты, персонал, посетители).

Активизация механизмов, путей передачи возбудителей под воздействием интенсивного ухода за больными, большого количества инвазивных процедур, а также неизбежных нарушений эпидемиологически безопасных правил поведения персонала при экстренных ситуациях.

4. Формирование госпитальных штаммов ‑ особой разновидности микроорганизмов, обладающих множественной устойчивостью к антибиотикам.

5. Вынужденная концентрация тяжелобольных, жизнь которых часто невозможна без «протезирования» функций (искусственная вентиляция легких, парентеральное питание и т.п.).

6. Широкое использование сложной техники, требующей особых методов дезинфекции и стерилизации.

7. Недостаточное знание и слабая мотивация персонала по выполнению правил санитарно-противоэпидемического режима.

Эпидемиологические особенности ВБИ в ОАРИТ. Для возникновения инфекции необходимо наличие трех составляющих: а) источника возбудителя инфекции (семя), механизма передачи возбудителей (сеятель), восприимчивого к инфекции организма (почва).

Основными источниками возбудителей ВБИ являются пациенты, персонал, предметы обстановки, особенно влажные, где большинство микроорганизмов могут не только длительно выживать, но и размножаться. Совокупность основных источников возбудителей инфекции образует резервуар возбудителей.

Важнейшим резервуаром большинства возбудителей ВБИ является человек. На поверхности его тела находятся представители различных биолого-экологических групп микроорганизмов: облигатные и факультативные паразиты, сапрофиты. Среди аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов чаще других встречаются микрококки, коринеформные и энтеробактерии, стрептококки, грибы. Среди анаэробных микроорганизмов - бактероиды, пепто- и пептострептококки, анаэробные представители коринеформных бактерий и некоторые другие. Практически все перечисленные микроорганизмы в течение более или менее длительного времени обнаруживаются на поверхности кожи, слизистых оболочек, в волосяных фолликулах, секретах потовых и сальных желез. Здесь имеются оптимальные температура, влажность, слабокислая среда и достаточное количество пищевых субстратов в среднем для 10¹⁵ микроорганизмов. Эта величина более чем в 10¹⁰ раз превышает, например, число жизнеспособных микроорганизмов, содержащихся в воздухе после операции, или в 10⁴-10⁸ раз больше, чем на полу лечебного учреждения с невысокими санитарно-гигиеническими характеристиками.

Микроорганизмы, находящиеся на коже людей, делятся на две группы. Постоянные (резидентные) обитатели заселяют кожу и слизистые оболочки сразу после рождения. Временные (транзитные) микроорганизмы, попадающие на кожу из внешней среды или при контактах с другими людьми, могут находиться на коже в течение нескольких часов или дней. Транзитная микрофлора чаще всего имеется на кистях рук и других открытых участках тела. Наибольшее количество резидентных микробов встречается на коже подмышечных и паховых складок, на лице, в носу, желудочно-кишечном тракте, т.е. на влажных участках поверхности человеческого тела. При снижении иммунитета количество микроорганизмов на теле увеличивается в десятки и сотни раз.

Резервуарами возбудителей во внешней среде ОАРИТ чаще всего являются влажные поверхности санитарно-технических узлов, уборочный инвентарь, мыльницы, увлажнители и другие комплектующие детали дыхательного контура аппаратов ИВЛ, емкости для рабочих растворов дезинфектантов, многодозовые флаконы с медикаментами, особенно солевыми, полиионными растворами, аминокислотами, энзим-содержащими препаратами и т.п.

В воздухе, на поверхностях стен, потолка и т.п. подавляющее большинство микроорганизмов быстро высыхает, утрачивает вирулентность и погибает в течение нескольких минут или часов.

Структура возбудителей инфекции в отделениях разных учреждений может сильно отличаться. Наиболее частыми видами возбудителей являются грам-отрицательные бактерии (ГОБ). Среди них представители семейства Enterobacteriaceae: клебсиела (Klebsiella pneumonia), энтеробактер, цитробактер (Citrobacter spp.), протеи, серрации, кишечная палочка (E.Coli). Столь же часто выделяются аэробные неферментирующие грамотрицательные палочки: синегнойная палочка (Pseudomonas aeruginosa) ацинетобактер (Acinetobacter baumannii). Благодаря своей устойчивости во внешней среде грам-отрицательные бактерии способны длительно выживать во влажных участках окружающего пространства (растворы лекарственных средств, рабочие растворы дезинфектантов и антисептиков, увлажнители, отсосы, переходники, мочеприемники, санитарно-техническое оборудование и инвентарь, вазы для цветов и т.п.).

Значительное место в структуре возбудителей занимают грам-положительные кокки: золотистый стафилококк, эпидермальный и сапрофитный стафилококки, стрептококки. Присутствие на кожных покровах человека, способность прикрепляться к стенкам сосудистых и других катетеров, протезам и т.п. помогают коккам вызывать так называемые катетер (полимер) - ассоциированные инфекции.

В отделениях для больных со значительным снижением иммунитета увеличивается этиологическое значение грибов из группы кандида, аспергилиус и др. Грибы из рода кандида занимают четвертое место среди наиболее часто выделяемых из крови возбудителей. Около двух третей первичных фунгемий среди пациентов ОАРИТ связано с использованием центральных венозных катетеров. Более половины случаев фунгемии заканчиваются летальным исходом.

Важной особенностью является то, что многие возбудители ВБИ, обнаруживаемые у пациентов и во внешней среде ОАРИТ, приобретают устойчивость к большинству применяемых антибиотиков. Такие микроорганизмы получили название «госпитальных штаммов». Антибиотико-резистентность дает им селективные преимущества, что приводит к более широкому расселению во внешней среде, неэффективной антибактериальной профилактике и лечению. Наибольшую проблему для лечения представляют инфекции, вызванные метициллин (оксациллин)‑ резистентными золотистыми стафилококками (МРСА), грам-отрицательными бактериями, обладающими ферментом «бетта-лактамазой расширенного спектра действия» (БЛРСД). Лечение и уход за пациентами, у которых выделяются перечисленные возбудители, должны сопровождаться усилением мер профилактики, пространственной и функциональной изоляцией таких больных.

Основным механизмом передачи возбудителей ВБИ в ОАРИТ является контактный. Определенную роль могут играть аэрозольный и фекально-оральный (алиментарный).

Контактный механизм передачи осуществляется несколькими путями: при прямом контакте (как правило, посредством рук), при опосредованном контакте (контактно-бытовой путь передачи) - через окружающие бытовые предметы, при искусственном (артифициальном) пути передачи в результате медицинских манипуляций, посредством инструментов, приборов, аппаратуры, лекарственных и дезинфекционных средств, а также воздушным путем с помощью чешуек кожи, попадающих в воздух непосредственно с поверхности тела человека. (Каждую минуту у человека отшелушиваются примерно 200000 кожных чешуек. Около 20000 чешуек несут на себе жизнеспособные микроорганизмы. При этом одежда не является для них эффективным барьером. Наибольшее количество чешуек скапливается на постельном и нательном белье. Поэтому замена белья должна производиться аккуратно. В отделении грязное белье может кратковременно храниться в специальных мешках. Сортировка и хранение белья перед отправкой в прачечную производятся в отдельном помещении.)

Таким образом, перемещение возбудителей ВБИ от источников к пациенту происходит с помощью элементов внешней среды, важнейшими из которых в ОАРИТ являются руки персонала, дверные ручки и ручки водопроводных кранов, многоразовые полотенца, особенно не индивидуальные, катетеры, бронхоскопы, санационные трубки, комплектующие детали и поверхности аппаратов ИВЛ, дренажные системы, воздух.

Профилактика внутрибольничных инфекций. Комплекс мероприятий по недопущению заноса инфекционных заболеваний в лечебное учреждение, предупреждению возникновения и распространения инфекции внутри больницы, а также выносу инфекции за пределы лечебного учреждения объединяется понятием санитарно-противоэпидемический режим (СПЭР - синонимы: эпидемиологический надзор, инфекционный контроль).

Осуществление СПЭР регламентировано общегосударственными правилами и нормами. В организации СПЭР принимают участие руководители больниц, госпитальные эпидемиологи, другой медицинский персонал, служба материально-технического обеспечения, специалисты Центров Госсанэпиднадзора и др.

Ответственность за организацию СПЭР в ОАРИТ возлагается на заведующего (начальника). Старшая медицинская сестра отделения непосредственно организует выполнение и несет персональную ответственность за соблюдение СПЭР. Средний и младший медицинский персонал обязан выполнять СПЭР в повседневной деятельности.

Основными элементами СПЭР в ОАРИТ являются:

- обучение, медицинское наблюдение и профилактика ВБИ у персонала,

- контроль допуска посетителей в ОАРИТ,

- обеспечение оптимальных условий пребывания и лечения пациентов, труда и отдыха персонала,

- выполнение требований по санитарному содержанию помещений,

- организация дезинфекционных и стерилизационных мероприятий,

- соблюдение асептики и антисептики, мер предосторожности при уходе за больными, выполнении инвазивных процедур,

- своевременная диагностика внутрибольничных инфекций, организация профилактики и проведения противоэпидемических мероприятий.

Несмотря на то, что методы борьбы с ВБИ универсальны, их применение в ОАРИТ имеет ряд особенностей. В отличие от других лечебных отделений элементы СПЭР должны выполняться всем персоналом ОАРИТ интенсивно, комплексно и непрерывно.

Обучение медицинских работников проблемам ВБИ является первым и наиболее значимым элементом СПЭР. Повышение компетенции позволяет повысить мотивацию по выполнению правил СПЭР и, таким образом, снизить заболеваемость, летальность и социально-экономические потери, связанные с ВБИ.

С целью своевременного выявления и предотвращения заноса инфекции в отделение медицинский персонал должен проходить обязательные профилактические обследования и осмотры при поступлении на работу и в процессе работы. При наличии признаков инфекции, воспалительных или гнойничковых заболеваний необходимо решение заведующего отделением о возможности допуска сотрудника к работе.

Медицинские работники подвергаются риску заражения через кровь при более чем 30 инфекциях, среди которых особое место занимают вирусные гепатиты и ВИЧ-инфекция. Каждого больного следует считать потенциально опасным в отношении этих инфекций. Несмотря на то, что наибольшая инфицированность вирусным гепатитом «В» регистрируется у персонала гемодиализных, хирургических отделений и ОАРИТ, все медицинские работники должны знать и применять универсальные меры предосторожности при контактах с больными.

Порядок посещения пациентов родственниками устанавливается администрацией лечебного учреждения или отделения. Обязательным требованием является отсутствие у посещающего лица инфекционного заболевания (ОРЗ и др.). Желательно наличие сменной одежды, халата и бахил. При входе и выходе из отделения желательно производить антисептику рук. Лица, помогающие ухаживать за больным, должны быть ознакомлены с правилами ухода и соблюдения основных элементов СПЭР.

ОАРИТ относится к лечебным подразделениям с особым асептическим режимом. Поэтому при размещении отделения принципиальное значение имеет соответствие набора, площади и дизайна помещений виду и объему оказываемой помощи, четкое разграничение «чистой» и «грязной» территорий. В зависимости от задач, контингента и количества больных, категории лечебного учреждения в составе отделения может развертываться до 40 помещений, расположенных в двух зонах: лечебной и зоне общих помещений. Для обеспечения СПЭР в составе ОАРИТ должны оборудоваться палата ‑ изолятор, помещение для приготовления инфузионных растворов и питательных смесей, стерилизационная, дезинфекционная наркозно-дыхательной аппаратуры, мытья и дезинфекции суден и клеенок, сортировки и временного хранения грязного белья, кладовые для предметов уборки и для чистого белья, санитарный пропускник персонала, туалет и др.

Предусматривается наличие приточно-вытяжной вентиляции с механическим побуждением и преобладанием притока над вытяжкой. При неэффективной вентиляции необходимо проветривать помещение через форточки (фрамуги) не менее четырех раз в сутки. Температура воздуха должна составлять 22⁰ С, влажность 55-60%.

Ежедневная влажная уборка и дезинфекция помещений должна осуществляться дважды в день. Генеральные уборки проводятся по утвержденному графику не реже одного раза в месяц с тщательным мытьем стен, полов, всего оборудования, а также протиранием мебели. После уборки и в процессе работы помещения облучаются ультрафиолетовыми лампами из расчета 1 ватт мощности лампы на 1 м³. Предпочтительнее использование «безозонных» ламп. При применении «озонных» ламп необходимо тщательно проветривать помещение в течение 30 мин после каждого сеанса облучения. Смена постельного белья производится один раз в 7 дней, а в случае загрязнения - немедленно. В отделениях для новорожденных используется только стерильное белье. Сортировка и временное хранение грязного белья в отделениях допускается в специальном помещении или в санитарной комнате в закрытой таре не более 12 ч. Помещение и емкость для белья дезинфицируются ежедневно.

Неопасные отходы помещаются в одноразовые емкости (пакеты) белого цвета, опасные (рискованные), содержащие загрязненные выделениями больных материалы, помещаются в пакеты желтого цвета со специальной маркировкой. Острый инструментарий (иглы, перья) после дезинфекции помещается в одноразовую твердую упаковку.

Один раз в год проводится косметический ремонт помещений. Устранение текущих дефектов, особенно ликвидация протечек и т.п., должно осуществляться незамедлительно. В период проведения текущего или капитального ремонта функционирование помещений прекращается.

В связи с тем, что основными путями передачи возбудителей ВБИ в ОАРИТ является контактно-бытовой и артифициальный, важнейшими элементами СПЭР являются своевременная антисептика рук персонала и качественная дезинфекция поверхностей.

Для удобства использования и с целью экономии времени оборудование для обработки рук (раковины, локтевые дозаторы и т.п.) должно быть расположены рядом с местом, где проводятся лечебные или диагностические процедуры. Количество раковин, дозаторов определяется числом обслуживаемых пациентов. При недостаточном количестве или неудобном расположении оборудования могут применяться индивидуальные спиртовые антисептики в небольших (100-250 мл) емкостях.

Важно соблюдать определенную технику обработки рук (рис. 49.1), без которой участки кожи, особенно кончики пальцев и их внутренние поверхности остаются контаминированными. Персоналу следует отказаться от ношения колец, лака для ногтей и других украшений во время работы, так как это может затруднить удаление микроорганизмов при обработке рук.

Рис. 49.1. Техника обработки рук

Традиционно различают три уровня обработки (деконтаминации) рук: мытье рук с мылом, гигиеническая и хирургическая антисептика рук.

Мытье рук с мылом удаляет загрязнение и до 99% транзитной микрофлоры. Применяется в начале рабочего дня для удаления видимых загрязнений, после посещения туалета, перед приготовлением и приемом пищи. Мытье рук может применяться до и после контакта с пациентом, как правило, при отсутствии антисептиков. Предпочтительнее использовать жидкое мыло в дозаторах однократного применения. Для защиты кожи рук перед применением мыла или антисептика руки увлажняются. В случае многократного использования дозаторы опорожняют, моют, высушивают и только после этого заполняют новой порцией мыла. При использовании кускового мыла следует применять мыльницы, позволяющие мылу высыхать.

Гигиеническая антисептика рук уничтожает и удаляет транзитную микрофлору с помощью различных антимикробных препаратов. Гигиеническая антисептика должна обязательно проводиться перед и после надевания перчаток, выполнения инвазивных процедур, манипуляций с ранами, катетерами, работой с восприимчивыми пациентами и новорожденными, после контакта с выделениями и предметами, имеющими вероятность микробной контаминации.

Для экономии времени чаще применяются спиртовые растворы антисептиков. В случае загрязнения рук их следует сначала вымыть водой с мылом, после чего 3-5 мл спиртового раствора антисептика втирается до высыхания (вытирать руки не следует). Для предупреждения сухости кожи, трещин и дерматитов следует хорошо высушивать руки, использовать необходимое (без излишков) количество антисептиков со смягчающими добавками. После работы рекомендуется применять смягчающие кожу средства (глицерин, кремы и т.п.).

Хирургическая антисептика рук проводится перед любыми хирургическими вмешательствами и манипуляциями и отличается от гигиенической антисептики только удлинением обработки до 2-5 мин и включением в обработку запястий и предплечий (рис. 49.1).

Следующим важнейшим элементом СПЭР являются дезинфекционно-стерилизационные мероприятия. Так же как и обработка рук, эти мероприятия предназначены для разрыва механизма передачи возбудителя. Дезинфекция ‑ удаление или уничтожение возбудителей инфекции (кроме бактериальных спор) на объектах внешней среды, может проводиться в отсутствии выявленного источника возбудителя инфекции ‑ профилактическая дезинфекция или при возникновении инфекционного заболевания ‑ очаговая дезинфекция. Очаговая дезинфекция подразделяется на текущую - в присутствии больного, и заключительную ‑ после изоляции, выписки, выздоровлении или смерти больного.

По уровню антимикробной активности различают несколько видов дезинфекции.

1. Д езинфекция высокого уровня ‑ с ее помощью уничтожаются вегетирующие бактерии, грибы, микобактерии туберкулеза, вирусы. Она неэффективна в отношении большинства бактериальных спор. Для нее применяются химические стерилизующие вещества, которые используются по туберкулоцидному режиму.

2. Дезинфекция среднего уровня уничтожает вегетативные бактерии, большинство грибов, микобактерии туберкулеза, большинство вирусов. Неэффективна в отношении спор.

3. Д езинфекция низкого уровня уничтожает вегетативные бактерии, некоторые грибы, некоторые вирусы. Неэффективна в отношении микобактерий туберкулеза и бактериальных спор.

На эффективность дезинфекции влияютразличные факторы, каждый из которых может уменьшить или полностью нейтрализовать процесс обеззараживания:

- устойчивость и количество микроорганизмов;

- качество предварительной очистки поверхностей; любые субстраты, особенно органические (кровь, белок, биопленки и т.п.), защищают микроорганизмы от действия дезинфектантов;

- концентрация дезинфектанта, с увеличением концентрации дезинфектанта повышается антимикробная активность, однако возрастает и риск повреждения поверхности;

- время контакта с дезинфектантом;

- состояние среды (жесткая вода нейтрализует некоторые дезинфектанты, повышенная температура ускоряет дезинфекцию).

В ОАРИТ могут использоваться четыре метода дезинфекции: механический (мытье, проветривание, вентиляция, обработка пылесосом, вытряхивание, стирка); физический (кипячение, действие горячего сухого и влажного воздуха, ультрафиолетовое облучение, сжигание); химический (применение дезинфектантов способом протирания, орошения, погружения или замачивания, засыпания сухим препаратом) и комбинированный.

Основным методом дезинфекции в ОАРИТ является химический. Существует множество дезинфектантов, количество которых стремительно увеличивается. Все дезинфектанты по их активно действующим веществам подразделяются на несколько групп.

Галоидсодержащие дезинфектанты ( содержат в качестве активного действующего вещества хлор, йод и бром): - хлорактивные (ДТСГК, анолиты, хлорамины, ДП-2Т, клорсепт, пресепт и др.). Препараты этой группы используют для обеззараживания выделений больных, смывных и сточных вод, малоценных вещей, санитарно-технического оборудования, предметов ухода за больными, кроме металлических. Необходимым условием для их использования является отдельное, хорошо вентилируемое помещение, отсутствие пациентов, наличие средств защиты кожи и органов дыхания у персонала при работе с этими средствами.

Иодофоры - комплексные соединения йода с поверхностно ‑ активными соединениями. К ним относятся йодопирон, йодонат, йодовидон и др. Йодофоры применяются как антисептики для обработки кожи рук, инъекционного и операционного поля.

Поверхностно-активные вещества включают средства на основе четвертичных аммониевых соединений. Обладают хорошими моющими и дезинфицирующими свойствами, малотоксичны и не имеют резких запахов. Их можно широко применять в ОАРИТ. При работе с ними для индивидуальной защиты достаточно использовать резиновые перчатки. Среди большого количества препаратов этой группы только пять разрешены для совмещенной в одном процессе дезинфекции и предстерилизационной очистки инструментов: Аламинол, Деконекс, Денталь ББ, Дюльбак ДТБ/Л, Санифект 128, ИД-212. Кроме перечисленных средств более широким спектром действия среди поверхносто-активных веществ отличаются Велтолен, Микробак-Форте, Гермасепт-плюс.

Кислородсодержащие средства в качестве действующего вещества содержат кислород в составе перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот. Широкий спектр антимикробного действия, отсутствие запаха позволяют использовать их в ОАРИТ. Однако высокая коррозионная активность, инактивация органическими субстратами, повреждающее действие на ткани, необходимость соблюдения предосторожности при приготовлении рабочих растворов из концентратов ограничивают их применение. Препараты Виркон и Пероксимед могут быть использованы для дезинфекции и предстерилизационной очистки инструментов в одном этапе.

Альдегидсодержащие средства содержат глютаровый или янтарный альдегиды. Ранее широко применялся альдегид муравьиной кислоты ‑ формальдегид. Его 40% раствор в воде называется формалин. В настоящее время из-за выраженных раздражающих свойств его использование ограничено в основном обеззараживанием вещей в дезинфекционных камерах, стерилизации изделий медицинского назначения в газовых стерилизаторах. Кроме этого, при контакте формальдегида с гипохлоритом может образовываться канцерогенное вещество.

Большинство альдегидсодержащих средств в качестве основного активнодействующего вещества содержат глутаровый альдегид. Препараты обладают широким спектром антимикробного действия, а в концентрации 2% и выше и спороцидным действием. Это позволяет относить их к классу дезинфектантов высокого уровня, а также использовать для стерилизации изделий медицинского назначения. Основными недостатками представителей этой группы является необходимость их использования в отсутствии пациентов и выраженная способность фиксировать органические загрязнения.

На основе янтарного альдегида и четвертичных аммониевых соединений создан препарат Гигасепт ФФ, применяемый для дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения.

Спирты (этиловый и изопропиловый) используются в основном в качестве антисептиков. Высокая летучесть, фиксирующие свойства, огнеопасность ограничивают применение спиртов в качестве дезинфектантов. Тем не менее, спирты могут применяться для дезинфекции небольших поверхностей и инструментов. Они обладают бактерицидным (кроме микобактерий туберкулеза) и вирулицидным действием, включая вирусы ВИЧ и гепатитов.

Универсальных препаратов, пригодных для дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации всех объектов при всех инфекциях не существует. Практически каждый из современных дезинфектантов имеет ограничения по спектру антимикробной активности, области применения, степени токсичности и влияния на материалы обрабатываемых объектов. Выбор конкретного дезинфектанта, определение сроков и кратности дезинфекции различных объектов должны производиться с учетом контингентов больных, свойств микроорганизмов, выделяемых от пациентов, особенностей внешней среды и обеззараживаемых объектов (конструкция, вид и степень загрязнения поверхностей, их устойчивость к дезинфекционным средствам), мер личной защиты пациентов и персонала, находящегося в отделении.

Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинского назначения организуется и проводится в соответствии с требованиями ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назаначения. Методы, средства и режимы», «Методических указаний по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения. № МУ-287-113 от 30.I2.98 г.», приказами МЗ РФ по профилактике отдельных инфекций, методическими указаниями по применению конкретных средств и др. Подготовка изделий медицинского назначения (далее изделий) к применению включает 3 этапа: дезинфекцию, предстерилизационную очистку, стерилизацию.

Дезинфекцию изделий проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.

Предстерилизационную очистку изделий осуществляют с целью удаления с них белковых, жировых и механических загрязнений, а также oстатков лекарственных препаратов.

Стерилизацию изделий проводят с целью уничтожения всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, включая их споровые формы.

Дезинфекцию, предстерилизационную очистку и стерилизацию изделий растворами химических средств проводят способом погружения в раствop с заполнением каналов и полостей. Разъемные изделия обрабатывают в разобранном виде.

При выборе дезинфектантов следует учитывать рекомендации изготовителей изделий. При использовании средств, обладающих одновременно дезинфицирующими и моющими свойствами, дезинфекция изделий может быть совмещена с их предстерилизационной очисткой в едином процессе. Дезинфекцию, предстерилизационную очистку и стерилизацию эндоскопов и инструментов к ним осуществляют согласно действующим документам (санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика инфекционных заболеваний при эндоскопических манипуляциях. СП3.1.1275-03», Приказ MЗ РФ от 16.06.97 г. № 184 «Об утверждении Методических указаний по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов и инструментов к ним, используемых в лечебно-профилактических учреждениях»).

Дезинфекция изделий направлена на профилактику внутрибольничного инфицирования медицинских работников и пациентов. Дезинфекции подлежат все изделия после применения у пациента.

Дезинфекцию осуществляют физическим (кипячение, паровой, воздушный) и химическим методами. С этой целью применяют средства, обладающие вирулицидным (в отношении вируса гепатита В, других возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ инфекции) действием.

Дезинфекцию проводят ручным (желательно в специально предназначенных для этой цели емкостях) или механизированным (дезинфицирующие машины и установки) способами. После дезинфекции изделия тщательно промывают водой (в соответствии с рекомендациями, изложенными в методических указаниях по применению конкретных средств) и высушивают.

Предстерилизационная очистка (ПСО) изделий проводится в централизованных стерилизационных согласно соответствующим методическим документам. При отсутствии централизованных стерилизационных этот этап обработки проводится в специально выделенных помещениях ОАРИТ. ПСО изделий осуществляют после дезинфекции или при совмещении с дезинфекцией в одном процессе (в зависимости от применяемого средства). Обработка производится ручным или механизированным (в соответствии с инструкцией по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию) способами.

Качество ПСО изделий оценивают по отсутствию положительных проб на наличие крови путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы; на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют pH более 8, 5) ‑ путем постановки фенолфталеиновой пробы.

Стерилизацию изделий проводят в централизованных стерилизационных согласно соответствующим методическим документам. При отсутствии централизованных стерилизационных этот этап обработки осуществляют в специально выделенных помещениях ЛПУ.

Стерилизации подвергают все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью (в организме пациента или вводимой в него) и инъекционными препаратами, а также изделия, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизацию осуществляют физическим (паровой, воздушный, с применением нагретых шариков), химическим (применением растворов химических средств, газовый) или комбинированным (плазменный) методами. Для этих целей используют паровые, воздушные, гласперленовые (шариковые), газовые и плазменные стерилизаторы.

При паровом, воздушном, газовом и плазменном методах изделия стерилизуют в упакованном виде, используя упаковочные материалы (бумажные, комбинированные, пластиковые материалы, пергамент, бязь), разрешенные в установленном порядке для применения при соответствующих методах стерилизации. Как правило, упаковочные материалы используют однократно. При паровом методе, кроме того, используют стерилизационные коробки бeз фильтра и с фильтром. При воздушном методе допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках), после чего их используют сразу по назначению.

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких металлов, cтеклa, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое бельё, перевязочный и лигатурный шовный материалы, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионно-нестойких металлов, шприцы с пометкой 200⁰С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины. Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85⁰С до исчезновения видимой влаги.

Растворы химических средств, как правило, применяют для стерилизации только тех изделий, в конструкцию которых входят не устойчивые к нагреванию (термолабильные) материалы, не позволяющие использовать другие методы стерилизации. При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости. Во избежание разбавления рабочих растворов, особенно используемых многократно, погружаемые в них изделия не должны содержать видимой влаги.

После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия промывают в стерильной жидкости (питьевая вода, 0, 9% раствор натрия хлорида), налитой в стерильные емкости, согласно рекомендациям методических документов по применению конкретных средств. Промытые стерильные изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Газовым методом стерилизуют изделия из различных, в том числе термолабильных материалов, используя в качестве стерилизующих средств окись этилена, смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1: 2, 5 соответственно), формальдегид, озон. Перед стерилизацией газовым методом с изделий после предстерилизационной очистки удаляют видимую влагу. Стерилизацию осуществляют при температурах в диапазоне 18-80⁰С (в зависимости от типа стерилизатора и вида стерилизуемого изделия) в соответствии с режимами, регламентированными методическими документами по применению конкретных средств, по стерилизации конкретных групп изделий, а также согласно инструкциям по эксплуатации стерилизаторов, разрешенных к применению.

Комбинированным методом (используя стерилизующее средство «СТЕРРАД» в плазменном стерилизаторе «СТЕРРАД IOOC») стерилизуют хирургические, офтальмологические, эндоскопические инструменты, жесткие и гибкие эндоскопы, оптические устройства и приспособления, волоконные световодные кабели, зонды и датчики, электропроводные шнуры и кабели и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс, стекла и кремния.