Студопедия

Главная страница Случайная страница

КАТЕГОРИИ:

АвтомобилиАстрономияБиологияГеографияДом и садДругие языкиДругоеИнформатикаИсторияКультураЛитератураЛогикаМатематикаМедицинаМеталлургияМеханикаОбразованиеОхрана трудаПедагогикаПолитикаПравоПсихологияРелигияРиторикаСоциологияСпортСтроительствоТехнологияТуризмФизикаФилософияФинансыХимияЧерчениеЭкологияЭкономикаЭлектроника






Нормальная микрофлора






Характерная особенность системы воздухоносных путей — присутствие разнообразных бактерий (в том числе патогенных) в верхних отделах и относительная стерильность зон газообмена.

Микрофлора носовых ходов. Наиболее часто обнаруживают дифтероиды, коагулаза-отрицательные стафилококки, а-гемолитические стрептококки, нейссерии и др. Следует помнить, что также можно вы ­делить (нередко при отсутствии клинических проявлений) потенциаль­ные патогены коагулаза-положительные Staphylococcus aureus, Escherichia coli. β -гемолитические стрептококки, протей Подобные состояния обычно квалифицируют как «носительство» с возможностью передачи микроорганизма другому лицу. Более разнообразный спектр микроорганизмов с доминированием грамотрицательной микрофлоры обнаруживают у детей до 1 года.

Микрофлора зева. Микробиоценоз ещё более разнообразный (по мно­гообразию видов уступает лишь толстой кишке и ротовой полости). Поскольку здесь смешивается микрофлораЖК'Г и воздухоносных путей, то из зева выделяют комменсалы и патогены, относящиеся к обеим систе мам. Представителями резидентной микрофлоры считаю т дифтероиды (включая палочку Хофманни). ко агуз а-отрицателыше стафилокок­ки, а-гемолитические и негемолитические стрептококки, нейссерии, MoraxeMa (Branhame.Ua) catarrhalis, микрококки, энтерококки, бак­тероиды, пре.вотелли, боррелии, трепонемы и актиномииеты. Не­сколько реже выделяют коагулаза-положительный Staphylococcus aureus. Streptococcus pneumoniae, каидиды, β -гемолитические стрептококки, нокардии, менингококки, Haemophilus influenzae и кишечные бакте­рии.

Интерпретировать результаты бактериологических исследований сле­дует осторожно, т.к. взаимоотношения различных видов бактерий (бо­лезнетворных н умеренно патогенных видов) с макроорганизмом слож­ны и в большинстве случаев их присутствие недолговременно и не вызы­вает клинически выраженных заболеваний.

Нижние отделы дыхательных путей обычно не содержат бактерий; их инвазия и аккумуляция приводят к развитию патологического процес­са.

 

Взятие материала

 

Материалом для исследования обычно являются мазки из носа, но­соглотки, зева, мокрота и промывные воды бронхов. Значительно реже проводят исследования биоптатов лёгких, аспиратов трахеи и прочих об­разцов

Мазки из носа, носоглотки и зева забираются с помощью ватных тампонов. Материал забирают натошак до чистки зубов й ополаскивания полостей рта, носа и глотки. При заборе материала из носа используют тампоны, отдельные для каждой ноздри. При отсутствии секрета их мож­но смочить 0, 9% раствором NaCI. С помощью тампона маленького раз­мера (направляя строго горизонтально) можно достичь задней стенки глот­ки. При заборе материала из зева правильная техника проведения мазка имеет решающее значение. Нельзя прикасаться тампоном к слизистой оболочке полости рта и языка. Поскольку микроорганизмы располага­ются неравномерно, следует, используя один тампон, сначала обтереть правую миндалину, затем — нёбную дужку, язычок, левую миндалину и заднюю стенку глотки.

Мокрота забирается до начала антибактериальной терапии или через определенный промежуток времени, необходимый для выведения препарата из организма больного. Исследуется утренняя порция мокро­ты. Перед сбором мокроты больной должен прополоскать рот слабым раствором антисептика или кипяченой водой, почистить зубы. Мокроту собирают в стерильную посуду. Хранить мокроту до исследования сле­дует в холодильнике при 4" С не более 2-3 часов. Следует помнить, что мокрота должна происходить из нижних отделов; нет необходимости в принуждении больного, если у него в данный момент она не отходит; для облегчения её отхождения можно предварительно провести ингаляцию горячего 0, 9% раствора NaCI. Мокрота содержит микроорганизмы, ответственные за развитие инфекционного процесса, и виды, обита­ющие в ротовой полости. При хронических процессах отхождение мок­роты затруднено, и следует прибегать к бронхо-альвеолярному лаважу (что препятствует контаминации образца микрофлорой верхних дыхательных путей и полости рта).

 

Проведение исследования

 

При исследовании отделяемого верхних дыхательных путей посев тампоном производят на чашки Петри с 5 % кровяным агаром, ЖСЛ, Эндо, Сабуро, которые инкубируют при 37°С 18-24'часа. Просматривают выросшие колонии, выделяют чистые культуры, идентифицируют, опре­деляют чувствительность к антибиотикам.

При оценке результатов исследования следует учитывать качественный и количественный состав микрофлоры, содержащейся в исследуемом об­разце. Обнаружение микроорганизмов, не относящихся к нормальной микрофлоре верхних дыхательных путей или необычно большое количе­ство микробов какого-либо вида указывает на их этиологическую значи­мость в заболевании.

При исследовании мокроты выделяют гнойные комочки, промыва­ют их в чашке Петри с изотоническим раствором хлорида натрия, гото­вят мазки, окрашивают их по Граму и Цилю-Нильсену (для обнаружения туберкулезных палочек). 11ри бактериоскопии мазков можно ориентиро­вочно судить о характере и количестве микрофлоры в мокроте, а также выявить труднокультивируемые микроорганизмы.

Посев мокроты делают на ряд питательных сред (см. схему), растирая материал шпателем. Среды с посевами инкубируют при 37" С 18-24 часа, выделяют чистые культуры, идентифицируют их и определяют чувстви­тельность к антибактериальным препаратам.

Чтобы различить контаминацию мокроты микрофлорой верхних ды­хательных путей и полости рта, используют количественные методы исследования.

Мокроту для количественного исследования собирают в стерильную банку с бусами, туда же добавляют питательный бульон из расчета 1: 10 и встряхивают в течение нескольких минут, из полученной гомогенизиро­ванной мокроты готовят последовательные десятикратные разведения, из которых по 0, 1 мл засевают на питательные среды (см. схему). Через сутки инкубации при 37°С учитывают результаты: подсчитывают одно­типные по внешнему виду колонии, их число умножают на 10, так как посев 0, 1 мл, и на степень разведения материала. Из колоний готовят маз­ки, выделяют чистые культуры, идентифицируют, определяют чувстви­тельность к антибиотикам.

 

Оценка результатов

 

Клинически значимым считают высев возбудителей в количестве 106-10 7КОЕ/мл. Рост микроорганизмов в меньших разведениях расце­нивают как контаминацию микрофлорой верхних дыхательных путей. Следует, однако, учитывать, что при проведении антибактериальной те­рапии количественное обсеменение мокроты возбудителем может умень­шаться.

Определенное значение имеет вид выделенных микроорганизмов, результат ы первичной микроскопии мазка, повторность обнаруже­ния и нарастание количества определенного вида микроорганиз­мов в процессе заболевании.

 

Основные возбудители пневмоний у человека

Формы поражений Основные возбудители
I. Острые пневмонии Передающиеся при контактах с больным Streptococcus pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae. Haemophilus influenzae, Staphylococcus aureus Streptococcus pyogenes. Klebsiella pneumoniae. Neisseria meningitidis, Moraxella catarrhalis, Chlamydia pneumoniae, вирусы гриппа
Передающиеся приконтактах с животными или объектами окружающей среды Legionella pneumophila, Coxiella burnetii. Chlamydia psiltaci. PasteureUa multoсida
Наблюдаемые чаще у детей и подростков Chlamydia trachomatis, Staphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae. Haemophilus influenzae. стрептококки группы В, PC-вирус. Ц.MB
Госпитальные пневмонии Enterobacteriaceae, Pseudomonas aeruginosa. Acineiobacter calcoaceticus. Staphylococcus aureus
Пневмонии, вызванные возбудителями особо- опасных инфекций Francisella tularensis, Yersinia pestis, Bacillus anihracis, Pseudomonas pseudomallei
II. Стёртые или хронические Легочный туберкулез Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium bovis
Первичпые пневмонии при микозах Histoplasma capsulatum. Blastomyces dennutiiidis Сoccidioides immitis. Crvptococcus neofornums
Аспирационные пневмонии и легочные абсцессы Смешанные ассоциации анаэробных и аэробных бактерий
III. Пневмонии у лиц с иммунодефицитами Pneumocystis carimi. Mycobacterium avium-mtracelhilare виды Nocardia A sperg illus PIivcomvcetcs Candida ЦМВ

 

 

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЯЕМОГО ГЛАЗ И УШЕЙ

 

Нормальная микрофлора глаза в норме только с конъюнктивы и в небольшом количестве регуляр­но выделяются эпидермальный стафилококк, пейссерии, сарцины, у отдельных лиц временно могут встречаться золотистый стафилококк, а-гемолитические стрептококки, энтеробактерии, гемофильная па­лочка, микоплазмы.

Воспалительные заболевания глаза чаще всего локализуются на конъ­юнктиве, слизистой оболочке век, слезном мешке, реже затрагивают роговицу. Инфекция внутренних сред глазного яблока может развиться в результате ге­матогенного ее распространения при септическом процессе или после опера­ций на глазном яблоке, особенно у ослабленных больных после длительных курсов антибиотико- и гормонотерапии. Ведущую роль как возбудители за­нимают представители условно-патогенной группы микроорганизмов.

 

Взятие материала

 

Материал забирается до назначения антибиотиков врачом-окулис­том в присутствии лаборанта - микробиолога, который сразу производит посев взятого материала на питательные среды.

При наличии гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны, которыми забирают гной с внутренней поверхности нижнего века к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следит, чтобы рес­ницы при моргании не касались тампона (придерживать веки руками).

При отсутствии видимого гноя следует пользоваться тампонами, смо­ченными стерильным изотоническим раствором, чтобы,.собрать на там­пон как можно больше скудного отделяемого.

Секрет из слезного мешка берут ст ерильным ватным тампоном пос­ле осторожного массажа.

Материал с роговицы берут платиновой петлей после местного обезболи­вания. Мазки отделяемого на стекле для первичной микроскопии выполняют параллельно со сбором материала для микробиологического исследования.

 

Проведение исследования

 

При скудном отделяемом используют только жидкие питательные среды, такие, как среды накопления - сахарный бульон и среда для ана­эробов. При более обильном отделяемом необходимо использовать кровяной агар, сывороточный агар, шоколадный агар. При подозре­нии на гонококковую или дифтерийную этиологию конъюнктивита ис­пользуют соответствующие среды.

Все питательные среды после посева на них отделяемого инкубируют при 37°С 24-48 ч. Часто рост появляется только через 48 часов. При появлении роста делают мазки на стекле, которые окрашивают по Граму и производят высевы с жидких питательных сред на плотные среды: кровяной агар, среду Эндо, молочно-солевой агар, агар Сабуро.

Другие среды используют при соответствующих показаниях.

 

Оценка результатов

 

Выделение из патологического материала истинно патогенных мик­роорганизмов несомненно свидетельствует об их этиологической роли в воспалительном процессе. Обнаружение микроорганизмов условно-патогенной группы при

условии соблюдения правил асептики в момент взятия материала свиде­тельствует об их участии в воспалительном процессе тканей глаза или является показателем высокого риска развития воспалительного про цесса в ближайшем будущем, особенно в случаях, когда больным пред стоят оперативные вмешательства на органе зрения.

Оценка результатов

 

1 - очень скудный рост - рост только со сред накопления

2 - скудный рост - рост до 10 колоний

3 - умеренный рост - рост до 50 колоний

4 - обильный рост - рост свыше 50 колоний

Диагностически значимы 3 и 4 степени роста с учетом клиники заболевания и предшествующей антибиотикотерапии

 

Нормальная микрофлора уха

 

В норме в наружном ухе. в слуховом проходе присутствуют сапрофит­ные и условно-патогенные бактерии обитатели кожи. Это эпидер­мальный и сапрофитный стафилококк, дифтероиды. В среднем л внутреннем ухе микрофлора отсутствует.

При остром воспалительном процессе возбудителями могут быть золотистый и эпидермальный стафилококки, а и β - гемолитичес­кие стрептококки, гемофильная палочка, энтеробактерии, бакте­роиды, Corynebacterium diphtheriae. При хронических процессах чаще обнаруживают ассоциации грамотринательных микроорганизмов семей­стваэнтеробактерии, псевдомонады, а также микобактерии, актиномицеты и плесневые грибы.

Взятие материала

 

Отделяемое берут стерильным ватным тампоном. Наиболее досто­верные результаты исследования получают при пункции среднего уха че­рез непрорвавшуюся барабанную перепонку. При наружном отите следует обработать кожу прилегающих областей раствором антисептика, чтобы при взятии материала не было контаминации тампона сапрофит­ной микрофлорой.

 

IIроведение исследования

 

Материал засевают на кровяной агар, шоколадный агар, среду Сабу- ро (штриховой посев тампоном, которым брали отделяемое), а также на сахарный бульон и среду для анаэробов. Проводят микроскопию пер­вичных мазков отделяемого, окрашенных по Граму.

Инкубацию посевов па жидких средах проводят в аэробных условиях при 37 °С. кровяной агар - в атмосфере с 5 % СО2. Посевы просматрива­ют ежедневно. Отрицательный результат исследования выдается при отсутствии роста в течение семи суток. При появлении роста на плот­ных питательных средах проводят его количественную оценку и отсе­вают 2-3 колонии различной морфологии для последующей иден­тификации. С жидких сред делают мазки па стекле для микроскопии (окраска по Сраму) и производят высевы накровяной агар, молочно- солевой агар, среду Эндо.

 

Оценка результатов

При острых воспалительных процессах обычно высевают в боль­шом количестве монокультуры микроорганизмов и их этиологическая значимость не вызывает сомнения. Более трудна интерпретация результа­тов микробиологического исследования при хронических воспалитель­ных процессах, когда выявляют ассоциации бактерий. В таких случа­ях важна количественная оценка роста различных видов в ассоциации при первичном посеве патологического материала на плотные питатель­ные среды. Виду, преобладающему количественно, по-видимому, принад­лежит ведущая роль в этиологии инфекционного процесса, и характерис­тика биологических свойств этого вида (в том числе антибиограмма) наи­более важна для выбора тактики лечебных мероприятий.

 

Оценка результатов

1 - очень скудный роет - рост только со сред накопления

2 - скудный рост - рост до 10 колоний

3 - умеренный рост - рост до 50 колоний

4 - обильный рост - рост свыше 50 колоний

Диагностически значимы 3 и 4 степени роста с учетом клиники заболевания и предшествующей антибиотикотерапии


Поделиться с друзьями:

mylektsii.su - Мои Лекции - 2015-2024 год. (0.011 сек.)Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав Пожаловаться на материал